Мазок и анализ на дифтерию из зева и носа

Анализ на дифтерию – это лабораторное исследование, преследующее цель выявления в организме возбудителя дифтерийной инфекции.

Сдать анализ на дифтерию на Кропоткинской и Смоленской в Москве вы можете в клинике «ПЛАТНЫЙ КВД».

Возбудителем болезни является грамоложительная анаэробная коринебактерия (бацилла Леффлера).

• Попадая в организм, она вызывает острое воспаление ротоглотки и дыхательных путей.
• Оно сопровождается симптомами ангины, тонзиллита, околоминдального абсцесса.
• Анализ на дифтерию проводится путем бактериологического посева мазка, взятого из зева или носа.
• Культуральное исследование выполняется с целью выявления роста микробного патогена или его отсутствия.

1. При наличии роста ставится положительный диагноз, при отсутствии – отрицательный.
2. Рост колоний коринебактерий на питательной среде при отсутствии клинических проявлений инфекции означает ее бессимптомное носительство.
3. Кроме отсутствия инфекции, рост возбудителя дифтерии может не наблюдаться после , пройденной предварительно антибактериальной терапии.
4. Антибактериальные препараты искажают достоверность результатов исследования.
5. Следует учесть, что чувствительность возбудителя к антибиотикам в данном случае не определяется.
6. В данном случае подбор этиотропных препаратов осуществляется стандартным методом.
7. После обнаружения растущих штаммов коринебактерий определяют их токсигенные свойства.
8. Инкубационный период при дифтерии короткий, его длительность приближается к 1-4 дням.
9. У невакцинированных людей после инфицирования развивается:

• интенсивная интоксикация организма;
• острое фибринозное воспаление слизистой горла;
• миндалин;
• дыхательных путей.

• Диагностика инфекции может также проводиться путем анализа на антитела к дифтерии .
• Это исследование выполняется с помощью серологической реакции непрямой гемагглютинации (РНГА).
• Для этого используется венозная кровь.
• В сыворотке крови при положительном анализе находят специфические иммуноглобулиновые белки.

1. Они вырабатываются иммунной системой организма в ответ на проникновение инфекции.
2. Выявление в крови антител к дифтерии говорит о перенесенном ранее заболевании или выполненной прежде вакцинации.
3. При отрицательных результатах анализа делают вывод либо об отсутствии контакта организма с коринебактерий.
4. Также это может означать слабый иммунный ответ, при котором выработки антител не происходит.
5. Анализ на дифтерию с помощью мазка назначают с целью оценки эффективности проведенной терапии и контроля излеченности пациента.
6. Также его делают перед госпитализацией больных на стационарное лечение.
7. Исследование назначают в тех случаях, когда человек контактировал с больными дифтерией.
8. Анализ необходим для дифференцирования дифтерийной инфекции от других заболеваний, протекающих со схожими симптомами:

• бронхиальной астмой;
• ангинозным поражением горла;
• гнойно-фибринозным фарингитом;
• абсцессами миндалин.

Как сдавать анализ на дифтерию ?

За 2 часа до забора материала из зева воздерживаются от приема пищи, желательно взятие образца утром натощак.

Забор мазка осуществляют до начала приема этиотропных препаратов и не раньше, чем спустя 3 дня после окончания курса медикаментозной терапии.

Где сдать анализы на дифтерию?

• Исследование можно пройти в нашем медицинском центре.
• Срок выполнения анализа на дифтерию зависит от метода исследования.
• При бактериологическом посеве он составляет до 7 дней, при серодиагностике – 1-2 рабочих дня.

Как и зачем делают посев из носа?

Прокрутить страницу вверх

Бакпосев из носа на анализаторе + антибиотикограмма

Основные этапы бактериологического анализа

Бактериологический посев считается стандартной процедурой в определении инфекций. Он состоит из следующих этапов:

1. В носу берется биологический материал и сеется в питательную среду (агар-агар раствор, сахарный бульон).
2. Пробирки с материалом помещаются в благотворную для бактерий среду, где созданы все условия для их размножения.
3. Проводится изучение бактерий.
4. Получение антибиограммы.
5. Назначение терапии.

• длительное проведение исследования;
• высокие требования к квалификации работников лаборатории;
• строгие критерии изъятия биологического сырья;
• правила для подготовки к бактериологическому посеву из носовой полости.

Общие правила перед сдачей анализа:

1. В течение одного-трех дней необходимо убрать из рациона алкогольные напитки, продукты, ускоряющие процессы брожения в кишечнике (черный хлеб, капуста, огурцы, редька).
2. В течение одного дня не выполнять промывания носа.
3. В течение 3-4 дней не использовать антибактериальные лекарства.
4. В течение одного дня стоит воздержаться от использования капель и мазей в носовой полости.

Бакпосев может быть выполнен с материалом, взятым из носа, крови, мочи и т.д. Перед его взятием обязательно следует выдержать перерыв после применения антибиотиков.

Область применения бактериологического посева

Бактериологический посев применяют для постановки точного диагноза в следующих областях:

• лор заболевания;
• дерматология;
• урология;
• венерология;
• гинекология и другие области медицины.

Выполнение бактериологического посева одинаково эффективно как в отношении не острых, так и вяло протекающих, скрытых инфекций. Бактериологический посев очень часто применяется для обнаружения инфекций в носовой полости для диагностирования ринита, синусита. Также его широко применяют для гинекологических целей.

Однако многие из указанных медицинских областей напрасно злоупотребляют этой процедурой. Часто применение бактериального анализа зависит от материального интереса и нежелания или незнания врачами методик диагностирования синдромов.

Техника забора

Мазки из зева и носа забирают по определенному алгоритму. Он одинаков для обнаружения любых инфекций. Отличия заключаются в способе хранения и транспортировки материала при разных инфекциях.

Техника взятия мазка из зева выглядит следующим образом.

1. Пациента усаживают на стул, лицом к врачу, перед ним располагают источник света.
2. Врач предлагает человеку откинуть голову назад и максимально широко раскрыть рот.
3. Шпателем опускают язык вниз и прижимают его.
4. Ватным тампоном собирают слизь со всех стенок глотки.
5. Опускают тампон в стерильную пробирку и плотно закрывают ее.

Взятие мазка из зева

Затем пробирка с полученным материалом доставляется в лабораторию для посева на питательные среды. Процедура безболезненная, но доставляет неприятные ощущения. У человека с выраженным рвотным рефлексом прикосновение ватным тампоном к корню языка может спровоцировать рвоту.

Алгоритм забора мазка из носа:

1. Пациента усаживают перед врачом и источником света.
2. Врач предлагает человеку немного запрокинуть голову.
3. Стерильный ватный тампон вводят в оба носовых хода поочередно и собирают слизь с их стенок.
4. Помещают тампон в стерильную пробирку и транспортируют в лабораторию.

• Взятие мазка из носа
• Процедура тоже не вызывает болевых ощущений, но для некоторых пациентов дискомфортна.
• Исследуют полученный материал несколькими способами:

• экспресс-тест — позволяет выявить антигены к возбудителю, используется для диагностики гриппа в период эпидемии;
• бактериологическое исследование — делают посев носоглоточной слизи на питательные среды, анализ готов через 5-7 дней;
• ПЦР-диагностика — так называется наиболее точный метод, позволяющий выявить генетический материал возбудителя.

Выбор исследования определяется лечащим врачом в зависимости от заболевания.

Показания

Посев слизи из зева и носа на микрофлору, чувствительность к антибиотикам врач назначает для подтверждения диагноза разных инфекционных заболеваний у детей и взрослых. Забор мазка производится:

• при ангине;
• при подозрении на коклюш;
• для исключения дифтерии зева;
• при грибковых заболеваниях.

Берут мазок и здоровым людям при медицинских осмотрах. Сдавать мазок должны следующие категории людей:

• беременные женщины;
• лица, контактировавшие с больным дифтерией или ангиной;
• лица, поступающие на работу в пищевую промышленность, образовательные и дошкольные учреждения, медицинские учреждения.

У каждого человека в полости носа и зева живет нормальная и условно-патогенная микрофлора, ее количество не превышает определенного показателя. В нормальных условиях флора не вызывает у человека никаких заболеваний.

Как и зачем делают посев из носа? Ссылка на основную публикацию

Посев на дифтерию (Corynebacterium diphtheriae)

Микробиологическое исследование, позволяющее выявить возбудителя дифтерии (C. diphtheriae) в исследуемом биоматериале.

• Синонимы русские
• Посев на бациллы Леффлера, посев на BL, посев на дифтерийную палочку.
• Синонимы английские
• Corynebacterium diphtheriae сulture, Diphtheria сulture.
• Метод исследования
• Микробиологический метод.
• Какой биоматериал можно использовать для исследования?
• Мазок из зева и носа.
• Как правильно подготовиться к исследованию?

• За 3-4 часа до взятия мазков из ротоглотки (зева) не употреблять пищу, не пить, не чистить зубы, не полоскать рот/горло, не жевать жевательную резинку, не курить. За 3-4 часа до взятия мазков из носа не закапывать капли/спреи и не промывать нос. Взятие мазков оптимально выполнять утром, сразу после ночного сна.

Общая информация об исследовании

Corynebacterium diphtheriae (бациллы Леффлера) – это грамположительные бактерии рода Corynebacterium, являющиеся возбудителями дифтерии и способные к выработке дифтерийного токсина. Заболевание передается воздушно-капельным путем, источником инфекции являются больные люди или бактерионосители.

Инкубационный период составляет в среднем 2-5 дней. Происходит фибринозное воспаление слизистых оболочек ротоглотки и дыхательных путей с формированием псевдомембран и с симптомами общей интоксикации.

При токсической форме дифтерии также может поражаться сердце и нервная система. В некоторых случаях возможно бессимптомное носительство.

Диагноз «дифтерия» основывается на клинических данных, посев на дифтерию проводится для подтверждения.

Для чего используется исследование?

• Для подтверждения диагноза «дифтерия».
• Для дифференциальной диагностики заболеваний, протекающих со сходными симптомами, таких как ангины различного происхождения, паратонзиллярный абсцесс, инфекционный мононуклеоз, острый ларинготрахеит, эпиглоттит, бронхиальная астма.
• Чтобы оценить эффективность проводимой антибактерильной терапии.

Когда назначается исследование?

• При подозрении на дифтерию.
• Когда известно, что пациент контактировал с больными дифтерией.
• После проведения антибактериальной терапии – не менее чем через 2 недели после окончания курса антибиотиков.
• В некоторых случаях перед госпитализацией в стационар (с профилактической целью).

Что означают результаты?

Референсные значения: нет роста.

Выявление возбудителя дифтерии подтверждает диагноз «дифтерия» или, если симптомы заболевания отсутствуют, свидетельствует о бактерионосительстве. При отрицательном результате посева у больного с подозрением на дифтерию диагноз может быть подтвержден в том случае, когда у контактных лиц результат посева положительный, то есть выделяется возбудитель дифтерии.

Причины положительного результата

• Дифтерия или бессимптомное носительство C. diphtheriae.

Причины отрицательного результата

• Отсутствие дифтерии. Исключение составляют случаи, когда на момент исследования проводилось лечение антибиотиками.

Что может влиять на результат?

• Предшествующая антибактериальная терапия.

Важные замечания

Диагноз «дифтерия» основывается на клинической картине заболевания, поэтому лечение должно быть начато до получения лабораторного подтверждения заболевания. При положительном результате посева необходимо исследовать выделенный штамм С. diphtheriae на токсигенность.

1. Также рекомендуется
2. Кто назначает исследование?
3. Инфекционист, терапевт, врач общей практики, педиатр, ЛОР.
4. Литература

1. Macgregor R.R. Corynebacterium diphtheriae. In: Principles and practice of infectious disease / G.L. Mandell, Bennett J.E., Dolin R (Eds) ; 6th ed. – Churchill Livingstone, Philadelphia, PA 2005. – 2701 p.
2. Efstratiou A. Laboratory guidelines for the diagnosis of infections caused by Corynebacterium diphtheriae and C. ulceran / A. Efstratiou, R.C. Georg // Communicable disease and public health. – 1999. – Vol. 2, № 4. – P. 250–257.
3. Current approaches to the laboratory diagnosis of diphtheria / A. Efstratiou [et al.] // J. Infect. Dis. – 2000. – Vol. 181 (Suppl 1). – P. S138–S145.

Дифтерия

Дифтерию вызывают токсигенные штаммы Corynebacterium diphtheriae или палочки Леффлера, не токсигенные штаммы заболевания не вызывают. Дифтерийный токсин по своим свойствам относится к сильнодействующим ядам, уступая лишь ботулитическому и столбнячному.

Под воздействием токсина нарушается синтез белков во внутренних органах больного, что приводит к структурным и функциональным нарушениям, демиелинизация нервных волокон – к параличам и парезам. Способность к токсинообразованию проявляют лишь лизогенные штаммы C.

diphtheriae, инфицированные бактериофагом (р-фаг), несущим ген tox, кодирующий структуру токсина дифтерии. Передача бактериофагом гена tox нетоксигенным штаммам C.

diphtheriae, обитающим в носоглотке и накопление их в популяции, может сопровождаться развитием вспышки дифтерии.

Наиболее таксономически близкими к виду C.diphtheriae являются C.ulcerans и C.рseudotuberculosis, природные патогены крупного и мелкого рогатого скота, лошадей. Кроме того, на слизистой ротоглотки и носа часто встречается палочка Гофмана (C.

pseudodiphtheriticum), не обладающая патогенностью и токсигенностью для человека. Поэтому основной задачей лабораторной диагностики дифтерии является выявление токсигенных штаммов дифтерии и дифференцировка возбудителя дифтерии от других коринебактерий, нормальных обитателей носо- и ротоглотки.

Все микроорганизмы рода Corynebacterium – грамположительные полиморфные палочки, не образующие спор, хорошо растущие в аэробных условиях при 37°С. При окраске метиленовым синим в клетках C.diphtheriae отмечается внутриклеточная исчерченность, что объясняется наличием зерен волютина.

Окраска по Граму не используется из-за вариабельности окрашивания клеток. По форме колоний и некоторым биохимическим свойствам C.diphtheriae подразделяются на культурально-биохимические варианты – gravis, mitis, intermedius, однако все они обладают способностью вырабатывать дифтерийный токсин.

Тяжесть течения заболевания не связана с биохимическим вариантом C.diphtheriae. Токсигенные штаммы дифтерии более чувствительны к антибиотикам, чем не токсигенные.

Показания к обследованию

• Профилактическое обследование – выявление источников инфекции, группы населения с повышенным риском заболевания; наблюдение за циркуляцией токсигенных штаммов в популяции; лица, поступающие в детские дома, школы интернаты, специализированные учреждения для детей и взрослых;
• обследования по эпидемическим показаниям – лица с подтвержденным контактом с больным дифтерией или при эпидемии дифтерии в данной местности;
• диагностические исследования – при подозрении на заболевание дифтерией (тонзиллит, назофарингит или ларингит который протекает с налетами псевдомембранозного характера).

Дифференциальная диагностика. Заболевания, сопровождающиеся тонзиллитом (инфекционный мононуклеоз, ангины стрептококковой, стафилококковой этиологии и др.).

При культуральных исследованиях возбудитель C.diphtheriae дифференцируется от других коринебактерий, в первую очередь C.pseudodiphtheriticum, C.ulcerans, C.pseudotuberculosis.

Материал для исследований

• Мазок из ротоглотки и носа, при подозрении на дифтерию редких локализаций (глаз, рана, ухо и т.д.) – материал с пораженных участков, а также с миндалин и носа – культуральные исследования, обнаружение специфического фрагмента гена tox;
• сыворотка крови – выявление АТ.

Этиологическая лабораторная диагностика включает посев клинического материала с изучением токсигенных свойств на среде для определения токсигенности и биохимической идентификацией возбудителя, обнаружение АГ (дифтерийного токсина), выявление специфических АТ к дифтерийному токсину, обнаружение специфического фрагмента гена tox.

Сравнительная характеристика методов лабораторной диагностики и особенности интерпретации их результатов. Микроскопические исследования выполняют только для идентификации выделенной культуры. Микроскопия биологического материала не проводится.

Для посева используют материал соответствующих локализаций. Изучение токсигенных свойств на среде для определения токсигенности выполняют при использовании метода встречной иммунодиффузии токсина и антитоксических АТ в плотной питательной среде.

При отсутствии линий преципитации на среде для определения токсигенности через 48 ч инкубации культура признается не токсигенной.

Для биохимической идентификации используется тест с цистиназой (среда Пизу), определение уреазной и сахаролитической (сахароза, глюкоза, крахмал) активности.

Выдача ответа:

• при обнаружении специфических линий преципитации на среде для определения токсигенности через 24–48 ч, положительной пробе на цистиназу, отрицательной пробе на уреазу, характерных культуральных и биохимических свойств дается заключение о выделении токсигенного штамма C.diphtheriae принадлежащего к культурально-биохимическому варианту gravis, mitis;
• при отсутствии специфических линий преципитации на среде для определения токсигенности через 48 ч, положительной пробе на цистиназу, отрицательной пробе на уреазу, характерных культуральных и биохимических свойств дается заключение о выделении не токсигенного штамма C.diphtheriae принадлежащего к соответствующему культурально-биохимическому варианту;
• при наличии линий преципитации на среде для определения токсигенности, идентичных линиям контрольного штамма дифтерии, положительных проб на цистиназу, уреазу, ферментации глюкозы и крахмала, отсутствие ферментации сахарозы, отсутствие редукции нитратов в нитриты, культуру относят к виду C.ulcerans, токсигенный вариант;
• при выделении дифтероидов ответ выдается отрицательный.

При посеве возбудитель C.diphtheriae дифференцируется от других коринебактерий, в первую очередь C.pseudodiphtheriticum, C.ulcerans, C.pseudotuberculosis. Для выявления дифтерийного токсина используют методы РНГА или ИФА.

Это исследование не является обязательным в практических бактериологических лабораториях, однако может использоваться как дополнительное для выдачи предварительного ответа.

Метод также позволяет определить относительное (условное) количественное содержание токсина в исследуемой пробе.

Для выявления специфических АТ используют методы РПГА и РНГА. Метод РПГА используется для изучения напряженности противодифтерийного иммунитета. Условно-защитным титром АТ принят титр 1:20.

У больных определение титра АТ к АГ дифтерийной палочки в сыворотке крови методом РНГА проводится в двух пробах крови, собранных в начале заболевания и через 7–10 дней. Нарастание титра АТ в 3–4 раза во второй сыворотке относительно первой свидетельствует о перенесенной инфекции. Исследование используется преимущественно для ретроспективной диагностики дифтерии.

Обнаружение гена токсигенности (tox) методом ПЦР – наиболее быстрый и надежный метод лабораторной диагностики, однако он не дает информацию о способности микроорганизма к экспрессии дифтерийного токсина. Описаны случаи нетоксигенных штаммов дифтерии, несущих в себе

Дифтерия

Дифтерия – это острое инфекционное заболевание, опасное для жизни. Оно протекает в виде острого воспаления верхних дыхательных путей, преимущественно глотки (примерно 90% случаев), носа, кожи в местах ее повреждения, глаз или половых органов.

Основную угрозу, однако, представляет не воспаление, а отравление токсином, который вырабатывает бактерия – возбудитель заболевания, при этом преимущественно поражаются сердечно-сосудистая и нервная системы.

Возбудитель дифтерии и пути заражения

Возбудителем дифтерии являются Corynebacterium diphteriae – грамположительные бактерии в виде палочек с характерными колбовидными утолщениями на концах, которые в мазках располагаются попарно, под углом в виде римской цифры V по отношению друг к другу. Дифтерийные палочки в процессе жизнедеятельности выделяют дифтерийный токсин, фермент нейраминидазу и другие биохимически активные соединения.

Синтез дифтерийного токсина микробными клетками контролируется специальным геном tox. Бактерии могут терять его в процессе жизнедеятельности, утрачивая вместе с ним и свою способность вырабатывать токсин (токсигенность). И, наоборот, изначально нетоксигенные штаммы могут приобретать патогенные свойства, к счастью, это случается крайне редко.

Заболевание передается воздушно-капельным путем от больных дифтерией или от здоровых носителей инфекции, значительно реже – через предметы обихода.

Группа риска

Наиболее восприимчивы к заражению дифтерией дети в возрасте 3–7 лет, но в последние годы увеличилась заболеваемость подростков и взрослых.
Источником инфекции являются больные люди или здоровые носители токсигенных бактерий.

Наиболее заразны страдающие дифтерией зева, носа и гортани, так как они активно выделяют возбудителей заболевания с выдыхаемым воздухом. Больные дифтерией глаз, кожи могут распространять инфекцию контактным путем (руки, предметы быта).

Здоровые носители бактерий гораздо менее заразны, но отсутствие у них каких-либо внешних признаков их состояния не позволяет контролировать распространение ими инфекции, ведь выявить их можно только случайно в ходе массовых диспансерных обследований.

В результате большинство случаев заражения дифтерией обусловлено контактом со здоровыми носителями дифтерийной палочки.

Инкубационный период (время от момента заражения до появления первых признаков заболевания) составляет 2–10 дней.

Дифтерийный токсин

Токсин, вырабатываемый дифтерийной палочкой, состоит из нескольких компонентов. Один из них – фермент гиалуронидаза разрушает гиалуроновую кислоту капилляров и увеличивает их проницаемость, что приводит к выходу из сосудов и пропитыванию окружающих тканей плазмой крови с отложением белка фибриногена.

Второй компонент – некротоксин разрушает клетки эпителия с выделением из них фермента тромбокиназы. Тромбокиназа способствует превращению фибриногена в фибрин и образованию на поверхности тканей фибринной пленки.

При действии дифтерийного токсина на небные миндалины, которые покрыты несколькими слоями эпителиальных клеток, формируется фибиринная пленка, проникающая вглубь эпителия миндалин и плотно спаянная с ним.

Третий (основной) компонент – собственно токсин способен блокировать процессы клеточного дыхания и синтеза белковых молекул. Наиболее чувствительными к его действию являются капилляры, клетки миокарда и нервные клетки.

В результате развивается дистрофия миокарда и инфекционно-токсический миокардит, повреждение капилляров приводит к инфекционно-токсическому шоку, повреждение шванновских клеток (вспомогательные клетки нервной ткани) приводит к демиелинизации нервных волокон (разрушение электроизолирующего слоя миелина с нарушением проведения нервных импульсов по нервным волокнам). Кроме того, дифтерийный токсин вызывает общую интоксикацию организма.

Симптомы и течение

Дифтерия зева обычно начинается с небольшого повышения температуры, незначительной болезненности при глотании, покраснения и отечности миндалин, формированию на них специфического пленчатого налета, увеличения передних верхних шейных лимфатических узлов.

Цвет пленок – обычно белый в первые 2–3 дня заболевания, но потом приобретает серый или желтовато-серый цвет.

Примерно через неделю заболевание, или заканчивается выздоровлением (легкая форма, как правило, у привитых от дифтерии), или переходит в более тяжелую токсическую форму, обусловленную системным действием дифтерийного токсина.

Токсическая форма дифтерии всегда протекает очень тяжело. Она характеризуется очень высокой температурой тела (39,5-41,0°С), сильными головными болями, сонливостью, апатией.

Кожа становится бледной, во рту отмечается сухость, у детей возможна многократная рвота и боль в животе.

Отек миндалин становится резко выраженным, может приводить к полному закрытию входа в глотку, распространяется на мягкое и твердое небо, часто также на носоглотку, дыхание затрудняется, голос часто становится гнусавым. Налет распространяется на все ткани ротоглотки.

Классическим признаком токсической формы дифтерии зева является отек подкожной клетчатки в области шеи, а иногда и грудной клетки, в результате чего кожа приобретает студнеобразную консистенцию. Передние верхние шейные лимфатические узлы значительно увеличены и болезненны.

Дифтерия носа протекает на фоне нормальной или слегка повышенной температуры тела, интоксикация отсутствует. Из носовых ходов видно серозно-гнойное или кровянисто-гнойное отделяемое.

На крыльях носа, щеках, лбу и подбородке появляются участки мокнутия, а затем сухие корочки. Внутри носа видны пленчатые налеты. Патологический процесс может также поражать придаточные пазухи носа.

При токсической форме наблюдается отек подкожной клетчатки щек и шеи.

Дифтерия глаза протекает как банальный конъюнктивит и характеризуется умеренной гиперемией и отеком конъюнктивы века, небольшим количеством серозно-гнойного отделяемого из конъюнктивального мешка (катаральная форма). Пленчатая форма проявляется выраженным отеком век, наличием на их конъюнктиве трудно снимаемых пленок серовато-белого цвета. Токсическая форма также сопровождается отеком клетчатки вокруг глазницы.

Дифтерия кожи приводитк длительному не заживлению любых повреждений кожи, гиперемии, на коже присутствует грязно-серый налет, отмечается плотная инфильтрация окружающей кожи.

Диагностика

Диагностику дифтерии проводят на основании данных осмотра больного и результатов анализов.

При осмотре за диагноз дифтерия говорят следующие признаки: наличие характерных пленок, а также затруднение дыхания и свистящий шум на вдохе, не характерные для ангины, лающий кашель.

Диагноз дифтерии по характерным клиническим признакам при заболевании, протекающем в легкой форме, поставить сложнее.

Анализы:

1. Общий анализ крови – признаки острого воспалительного процесса.

2. Исследования мазка под микроскопом (бактериоскопия) – выявление имеющих характерный вид бактерий Corynebacterium diphteriae.

3. Бактериологическое исследование – посев биологического материала на специальную питательную среду и культивирование колоний микроорганизмов.

4. Определение уровня (титра) антитоксических антител (высокий титр – 0,05 МЕ/мл и выше позволяет исключить дифтерию).

5. Серологическое исследование – определение специфических антител в сыворотке крови с помощью методов РПГА, ИФА и др.

Дифтерию зева нужно дифференцировать от острого тонзиллита (фолликулярная и лакунарная формы), ангины Симановского-Венсана (грибковое поражение), сифилитической ангины, ложнопленочной ангины при инфекционном мононуклеозе, паратонзиллярным абсцессом, эпидемическим паротитом, лейкозом. У детей необходимо отвести диагноз ложного крупа.

Лечение

Всех заболевших дифтерией, вне зависимости от тяжести состояния, необходимо госпитализировать в инфекционную больницу.

Лечение состоит в следующем:

1. Диета – витаминизированная, калорийная, прошедшая тщательную кулинарную обработку еда.

2. Этиотропная терапия (то есть направленная на устранение причины заболевания) – введение противодифтерийной сыворотки (ПДС), доза и количество раз введения зависят от тяжести и формы заболевания. При легкой форме ПДС вводится однократно внутримышечно в дозе 20–40 тыс. МЕ, при среднетяжелой форме – 50–80 тыс.

   МЕ однократно или, при необходимости, повторно в той же дозе через 24 часа. При лечении тяжелой формы заболевания суммарная доза увеличивается до 90–120 тыс. МЕ или даже до 150 тыс. МЕ (инфекционно-токсический шок, ДВС-синдром).

   При этом 2/3 дозы вводится сразу, и в течение первых суток госпитализации должно быть введено 3/4 суммарной дозы.

3. Антибиотики: при легких формах – эритромицин, рифампицин внутрь, при среднетяжелых и тяжелых формах – инъекционное введение пенициллинов или цефалоспоринов. Продолжительность курса – 10–14 дней. Антибиотики не влияют на дифтерийный токсин, но уменьшают количество бактерий, его вырабатывающих.

4. Местное лечение – полоскания и орошения дезинфицирующими растворами.

5. Дезинтоксикационная терапия – глюкозо-солевыми растворами с учетом суточной потребности в жидкости и ее потерь (среднетяжелая и тяжелая форма).

6. Глюкокортикостероиды – при среднетяжелой и тяжелой формах.

Лечение бактерионосителей проводят антибиотиками: тетрациклины (дети старше 9 лет), эритромицин, цефалоспорины на фоне общеукрепляющей терапии и устранения хронических очагов инфекции.

Осложнения

Среди наиболее серьезных осложненийдифтерии на сердечно-сосудистую систему можно выделить миокардиты, нарушения сердечного ритма.

Неврологические осложнения дифтерии обусловлены поражением различных черепных и периферических нервов и проявляются параличом аккомодации, косоглазием, парезами конечностей, а в более тяжелых случаях параличом дыхательных мышц и мышц диафрагмы.

Вторичными осложнениями дифтерии являются такие тяжелые патологические состояния как острые нарушения мозгового кровообращения (тромбозы, эмболия), метаболическая энцефалопатия, отек головного мозга, токсические поражения почек, дифтерийный гепатит, а также инфекционно-токсический шок и ДВС-синдром (синдром дессиминированного внутрисосудистого свертывания – тяжелое нарушение системы свертывания крови). Токсическая форма дифтерии может приводить к острой почечной, сердечно-сосудистой, дыхательной или полиорганнной недостаточности.

Неспецифическими осложнениями дифтерии являются паратонзиллярный абсцесс, отит, пневмония.

Вакцинация

Вакцинация от дифтерии проводится анатоксином, то есть инактивированным токсином. В ответ на его введение в организме образуются антитела не к Corynebacterium diphteriae, а к дифтерийному токсину.

Дифтерийный анатоксин входит в состав комбинированных отечественных вакцин АКДС (ассоциированная, то есть комплексная, вакцина против коклюша, дифтерии и столбняка), АаКДС (вакцина с бесклеточным коклюшным компонентом) и АДС (дифтерийно-столбнячный анатоксин), также «щадящих» вакцин АДС-М и АД-М. Кроме того, в России зарегистрированы вакцины компании «SanofiPasteur»: Тетракок (против дифтерии, столбняка, коклюша, полиомиелита) и Тетраксим (против дифтерии, столбняка, коклюша, полиомиелита, с бесклеточным коклюшным компонентом); Д.Т. Вакс (дифтерийно-столбнячный анатоксин для вакцинации детей в возрасте до 6 лет) и Имовакс Д.Т. Адюлт (дифтерийно-столбнячный анатоксин для вакцинации детей старше 6 лет и взрослых), а также Пентаксим (вакцина против дифтерии, столбняка, коклюша, полиомиелита и гемофильной инфекции с бесклеточным коклюшным компонентом).

Согласно российскому прививочному календарю, вакцинация детей в возрасте до года проводится в 3, 4–5 и 6 месяцев. Первая ревакцинация проводится в 18 месяцев, вторая – в 7 лет, третья – в 14. Взрослые должны ревакцинироваться от столбняка и дифтерии каждые 10 лет.

• Bellone ML., Puglisi A., Dal Piaz F., Hochkoeppler A. Production in Escherichia coli of recombinant COVID-19 spike protein fragments fused to CRM197. // Biochem Biophys Res Commun — 2021 — Vol558 — NNULL — p.79-85; PMID:33906110
• Bjorke B., Weller KG., Jones LE., Robinson GE., Vesser M., Chen L., Gage PJ., Gould TW., Mastick GS. Oculomotor nerve guidance and terminal branching requires interactions with differentiating extraocular muscles. // Dev Biol — 2021 — Vol — NNULL — p.; PMID:33905720
• Macina D., Evans KE. Bordetella pertussis in School-Age Children, Adolescents, and Adults: A Systematic Review of Epidemiology, Burden, and Mortality in the Middle East. // Infect Dis Ther — 2021 — Vol — NNULL — p.; PMID:33905101
• Mostafavi E., Ghasemian A., Abdinasir A., Nematollahi Mahani SA., Rawaf S., Salehi Vaziri M., Gouya MM., Minh Nhu Nguyen T., Al Awaidy S., Al Ariqi L., Islam MM., Abu Baker Abd Farag E., Obtel M., Omondi Mala P., Matar GM., Asghar RJ., Barakat A., Sahak MN., Abdulmonem Mansouri M., Swaka A. Emerging and Re-emerging Infectious Diseases in the WHO Eastern Mediterranean Region, 2001-2018. // Int J Health Policy Manag — 2021 — Vol — NNULL — p.; PMID:33904695
• Devi U., Baruah PJ., Dutta S., Paine SK., Gogoi N., Borah PK. Immune status against diphtheria toxin in tea garden population surveyed in Dibrugarh district, Assam. // Natl Med J India — 2021 — Vol33 — N3 — p.187-188; PMID:33904429
• Chang XX., Fan K., Meng W., Guo J., Zhao D., Yin W., Li H., Wang Z. Truncated Diphtheria Toxin DT390 Enhances the Humoral Immunogenicity of Porcine Circovirus Type 2 Capsid Antigen in Mice. // Viral Immunol — 2021 — Vol — NNULL — p.; PMID:33902339
• Kumar D., Gauthami S., Bayry J., Kaveri SV., Hegde NR. Antibody Therapy: From Diphtheria to Cancer, COVID-19, and Beyond. // Monoclon Antib Immunodiagn Immunother — 2021 — Vol40 — N2 — p.36-49; PMID:33900819
• De Sarro C., Papadopoli R., Cautela V., Nobile CGA., Pileggi C., Pavia M. Vaccination coverage among healthcare workers: pre-post intervention study to assess impact of an on-site vaccination-dedicated clinic. // Expert Rev Vaccines — 2021 — Vol — NNULL — p.; PMID:33896347
• Stevens NE., van Wolfswinkel M., Bao W., Ryan FJ., Brook B., Amenyogbe N., Marshall HS., Lynn MA., Kollmann TR., Tumes DJ., Lynn DJ. Immunisation with the BCG and DTPw vaccines induces different programs of trained immunity in mice. // Vaccine — 2021 — Vol — NNULL — p.; PMID:33895015
• Macina D., Evans KE. Bordetella pertussis in School-Age Children, Adolescents, and Adults: A Systematic Review of Epidemiology, Burden, and Mortality in Africa. // Infect Dis Ther — 2021 — Vol — NNULL — p.; PMID:33881713

Исследование биологического материала на дифтерию (Corynеbacterium diphtheriae) в Санкт⁠-⁠Петербурге ⁠-⁠ анализ в ЛабСтори

Дифтерия — острое инфекционное заболевание рото- и носоглотки. Возбудитель — дифтерийная палочка (Corynebacterium diphtheriae). Дифтерийная палочка чувствительна к воздействию прямых солнечных лучей, кипячению, дезинфицирующим средствам. В окружающей среде может сохраняться месяцами, в воде и молоке — 7 дней, на игрушках, белье, книгах, посуде — несколько недель.

Дифтерийная палочка продуцирует экзотоксин, с которым связано большинство клинических проявлений заболевания.

Дифтерия передается воздушно-капельным путем (при кашле, чихании, разговоре). Возможно распространение контактно-бытовым путем — через загрязненные игрушки, посуду, предметы обихода и пищевой — через зараженные продукты (молоко, сыр и пр.). Источник инфекции — больной человек и бактерионоситель.

Чаще всего дифтерийная палочка проникает в организм через слизистую ротоглотки.

В зависимости от тяжести заболевания отмечается повышение температуры от 38С до 40С, что сопровождается явлениями интоксикации: слабость, головная боль, ломота в мышцах, снижение артериального давления, бледность кожных покровов, тахикардия. Возникает боль при глотании.

На миндалинах появляется налет в виде беловато-серых блестящих пленок с ровными краями, который трудно отделяется от прилежащих тканей. Шейные и подчелюстные лимфоузлы могут быть увеличены, болезненны, отечны. При тяжелом течении наблюдается отек подкожно-жировой клетчатки шеи.

Может развиться инфекционно-токсический шок, кровоизлияния, бред, судороги. При поражении гортани возникает ее сужение, вплоть до полной невозможности дышать. Такое состояние называется «истинный круп».

К редким формам дифтерии относят поражение носа, глаз, ушей, трахеи и бронхов, кожи, половых органов. Среди осложнений — поражение сердца, печени, почек, нервной системы, летальный исход. В настоящее время разработана вакцина против дифтерии.

К какому врачу обратиться?

Терапевт;врач общей практики;кардиолог;педиатр;инфекционист;оториноларинголог.

Источники

1. Дифтерия: учебно-методическое пособие./ М.А. Иванова, Г.М. Давидович, О.А. Котович. — Минск: БГМУ 2013, — 23 с.

1. Подозрение на дифтерию.

2. Обследование контактных лиц.

3. Дифференциальная диагностика с заболеваниями с похожими клиническими симптомами.

4. Контроль излеченности перенесенной дифтерии.